Exames

Sem sinônimos

Instruções:
Informações de preparo e coleta

Técnica de Coleta:
– Antes de iniciar a coleta verificar os pontos de atenção;

– Verificar os locais solicitados pelo médico com os cadastrados no sistema de atendimento, em caso de erro no cadastro, solicitar alteração para a recepção, antes da coleta.

Técnica de Coleta:

1. LESÕES EM PELE

– Observar o local da lesão a ser escarificado;

– Se não houver nenhuma indicação de uma lesão específica, coletar material de mais de uma lesão escolhendo aquelas mais evidenciadas;

– Abrir o papel e posicioná-lo abaixo da lesão, esticando a pele;

– Coletar o material através da descamação/escarificação do local com o auxílio da pinça/lecron descartáveis ou esterilizadas, as primeiras escamas deverão ser descartadas;

– Coletar preferencialmente da borda da lesão;

– Recolher o máximo possível de material no centro do papel;

– Após a coleta, fechar cuidadosamente o papel respeitando as dobras já existentes;

– Vedar o papel com a própria etiqueta de código de barras. Caso tenha exame de cultura de fungos, colar a etiqueta no lado oposto do papel;

– Exemplos de cadastros genéricos:

– Micológico dos dedos da mão esquerda – coletar dos dedos afetados da mão esquerda no mesmo recipiente.

– Micológico das mãos – coletar um recipiente para as lesões da mão direita e outro recipiente para as lesões da mão esquerda.

Importante:

– Lesões muito superficiais e pouco descamativas, a lâmina pode ser utilizada para raspagem do local, a mesma deve ser enviada dentro do papel preto.

– No caso de coleta de bolhas, devemos coletar o teto da bolha, para isto, a mesma não pode estar íntegra. Em nenhum caso o colaborador poderá romper a bolha no momento da coleta.

Observações:
– Não utilizar fita durex, etiquetas, salina e outros tipos de materiais para a coleta de micológico de lesões de pele;
– O cliente não deve utilizar antifúngicos orais por 30 dias e pomadas antifúngicas 15 dias antes do exame, qualquer outra pomada não deve ser utilizada nas 24 h que antecedem a coleta;

2. UNHA

Abrir o papel e posicioná-lo abaixo do dedo para receber o material coletado. Fazer limpeza da unha com swab álcool, para remover possíveis sujidades, evitando assim presença de artefatos que impacta na qualidade da amostra.

Os locais de invasão e localização da infecção micótica apresentam variações de acordo com 3 formas clínicas possíveis:

Na infecção sub-ungueal (mais comum):
– Coletar amostras do leito ungueal (por baixo da unha), o mais próximo possível da cutícula (periferia e lúnula), com o auxílio pinça/lecron descartáveis ou esterilizadas;

– Se não for possível a separação da unha de seu leito (debridamento) coletar amostra do leito ungueal alcançável;

– Desprezar as primeiras escamas, recolhendo o máximo possível do material no centro do papel.

Na onicomicose branca superficial:
– Escarificar a superfície da unha;
– Desprezar as primeiras escamas, recolhendo o máximo possível do material no centro do papel.

Na onicomicose por cândida:

– A infecção atinge a pele ao redor da unha (paroníquia), a amostra deve ser coletada dos limites proximal e laterais da unha (cutícula). Se a unha se apresentar também alterada, deve-se raspar o leito e face inferior da unha;

– Desprezar as primeiras escamas, recolhendo o máximo possível do material no centro do papel;

– Após a coleta, fechar cuidadosamente o papel respeitando as dobras já existentes;

– Vedar o papel com a própria etiqueta de código de barras. Caso tenha exame de cultura de fungos, colar a etiqueta no lado oposto do papel;

– A unha só deve ser cortada, nos casos onde a mesma se encontre muito comprida e não permita o alcance da região a ser coletada;

– O pedaço da unha que foi cortado deve ser desprezado.

Exemplos de cadastro de regiões especificadas pelo médico solicitante:
– Micológico do 1º dedo da mão esquerda, 2º dedo da mão esquerda e 3º dedo de a mão esquerda coletar um recipiente para cada dedo;

– Micológico do pé esquerdo e micológico do pé direito – coletar um recipiente para cada pé solicitado;

– Quando o médico não especificar o local a ser coletado, coletar de todas as regiões afetadas.

Observações:
1. Para esta coleta, é necessário que o cliente esteja há pelo menos 24 h sem fazer uso de esmalte e/ou acetona.
2. Quando o paciente estiver fazendo uso de substâncias como iodo, mertiolate e violeta genciana, o médico assistente deverá ser consultado, pois interferem no exame.
3. Observar atentamente a solicitação médica. Por exemplo: micológico de unhas das mãos.
4. Nesse caso faz-se o raspado de todas as unhas, porém devem ser enviadas em duas cartolinas pretas distintas com identificação de mão direita e mão esquerda. O mesmo deve ser feito com as unhas dos pés.
5. Para a coleta da unha do pé, o ideal é que o cliente lave os pés no dia da realização da coleta e use de preferência meias de algodão e sapatos fechados. Na impossibilidade, realizar a limpeza das unhas com swab álcool, como orientado acima.

3. COURO CABELUDO

– Raspar o couro cabeludo com a pinça lecron /espátula descartável, as lesões descamativas e recolher o material no centro do papel. Coletar preferencialmente da borda da lesão. Desprezar as primeiras escamas;

– Retirar de 5 a 10 fios de cabelo, com o bulbo capilar, e encaminhar juntamente com as descamações já coletadas. Observar também, a presença de nódulos claros ou escuros nos fios de cabelo. Neste caso, o material a ser coletado são os fios de cabelo íntegros, com os nódulos;

– Após a coleta, fechar cuidadosamente o papel respeitando as dobras já existentes;

– Vedar o papel com a própria etiqueta de código de barras. Caso tenha exame de cultura de fungos, colar a etiqueta no lado oposto do papel.

Observações: Para esta coleta, o cliente deve estar há 24 h sem lavar os cabelos.

4. LESÃO NA VIRILHA E AXILAR

– Observar o local da lesão a ser escarificado;
– Desprezar as primeiras descamações;
– Abrir o papel e posicioná-lo abaixo da lesão e coletar o material através da descamação do local com o auxílio da pinça/lecron descartáveis ou esterilizadas;
– Retirar, se possível, 5 pelos com bulbo e encaminhar juntamente com as descamações;
– Atenção com presença de nódulos brancos ou negros;
– Após a coleta, fechar cuidadosamente o papel respeitando as dobras já existentes e vedar o papel com a própria etiqueta código de barras.

Cultura de fungos:
– Quando solicitado cultura para fungos isoladamente ou em conjunto com o micológico direto das regiões descritas acima (pele/lesões, unha, couro cabeludo), a coleta deve ser realizada da mesma forma, pois o material será utilizado tanto para pesquisa quanto para cultura;

– Identificar o mesmo recipiente, com a etiqueta do micológico direto e com a de cultura de fungos e atentar-se à quantidade de material encaminhado, quando solicitado em secreções, proceder da maneira indicada abaixo.

5. SECREÇÕES

Cultura de fungos secreções

– Abrir o invólucro do meio de transporte específico para cultura de secreção, meio de amies e retirar o swab;

– Coletar a secreção com o swab e introduzir dentro do tubo vedando-o bem;

– Identificar o meio de transporte com a etiqueta de código de barras.

6. RASPADO DE LÍNGUA

– O paciente deve ter realizado a higiene bucal;

– Realizar raspado da língua com pinça/lecron descartáveis ou esterilizadas;

– Com swab, recolher o material da pinça lecron/ espátula e introduzir dentro do tubo vedando bem;

– Identificar o meio de transporte com etiqueta de código de barras.

Observações:
– Quando o médico solicitar dois ou mais locais diferentes, coletar um recipiente para cada local especificado.

Em caso de desabastecimento do papel envelope para micológico:
– Pode-se utilizar lâminas e recipiente porta-lâminas;
– Identificar a lápis, na parte fosca da lâmina, o número de identificação do laboratório;
– Posicioná-la abaixo do local a ser coletado;
– Realizar o raspado;
– Cobrir o raspado com outra lâmina;
– Vedar as laterais com esparadrapo;
– Acondicionar as lâminas dentro do porta-lâminas e identificar com a etiqueta código de barras.

7. FEZES

Coletar as fezes em frasco estéril e enviar em meio de transporte Cary Blair.

8. URINA

– Realizar a higiene da região genital com lenços umedecidos;
– Iniciar a micção desprezando o primeiro jato e coletar o jato médio no frasco estéril;
– Transferir a urina para tubo cônico e vedar bem;
– Verificar se o volume está adequado (12 ml).

Interpretação:

Exame utilizado na confirmação laboratorial de clínica compatível com infecção fúngica. Geralmente, é possível estabelecer gênero e espécie do fungo infectante. Devido às características biológicas dos fungos, a resposta da cultura é normalmente demorada e muitas vezes servem como confirmação de infecção que já está em tratamento.
O antifungigrama visa a determinação de resistência a antifúngicos. Não é solicitado rotineiramente, pois perfil o de mutação para resistências aos antifúngicos das leveduras é baixo. Os fungos dimórficos geralmente não apresentam perfis de resistência que justifiquem esta preocupação. As cepas isoladas são testadas em técnicas padronizadas (em termos de concentração inibitória e fungicida), contra os antifúngicos mais utilizados no mercado.

Indicações:
Cultura: diagnóstico de processos infecciosos causados por agentes fúngicos. Antifungigrama: pode ser solicitado em alguns casos refratários a tratamento.

Interpretação clínica:
A positividade em culturas é interpretada em concordância com os dados clínicos e exames diretos das amostras. Deve a positividade ser mantida após a repetição dos cultivos. Este exame é mais sensível do que a pesquisa direta, o que explica alguns casos em que a cultura é positiva com pesquisa de fungos negativa. O inverso, pesquisa positiva com cultura negativa, pode ocorrer, quando é coletado material de paciente que já fez tratamento antifúngico tópico ou sistêmico. Nas culturas de material obtido em mucosas a análise dos resultados leva em conta a presença de fungos comensais, como a Candida por exemplo.

Sugestão de leitura complementar:

Rex JH, Pfaller MA, Galgiani JN, et al. Development of interpretive breakpoints for antifungal susceptibility testing: Conceptual framework and analysis of in vitro – in vivo correlation data for fluconazole, itraconazole and candida infections. Clin Infect Dis 1997; 24: 235-47.

Wanger A, Mills K, Nelson PW, et al. Comparison of Etest and NCCLS broth macrodilution method for antifungal susceptibility testing: Enhanced ability to detect amphotericin B-resistant Candida isolates. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 1995; 39 (11): 2520-2.